Concepto de muestra y tipos de muestras biológicas

Concepto

Una muestra biológica es una porción de tejido, fluido o material orgánico que se obtiene del paciente para su análisis con fines diagnósticos. Su valor depende de que la fase preanalítica (identificación, recogida, conservación y transporte correctos) se realice bien.

Tipos principales

• Orina: análisis elemental y sedimento, orina de 24 horas (control de diuresis y excreción), urocultivo (estudio microbiológico).

• Sangre: para bioquímica, hemograma (estudia el número, forma y composición de las células sanguíneas), serología y hemocultivo (detección de microorganismos en sangre).

• Heces: estudio de parásitos, sangre oculta y coprocultivo (estudio microbiológico de las heces).

• Esputo y secreciones respiratorias: estudio microbiológico.

• Exudados (faríngeo, nasal, ótico, vaginal, uretral, de heridas): requieren análisis inmediato o medio de transporte.

• Líquido cefalorraquídeo (LCR), líquidos de punción y biopsias.

Parámetros frecuentes

• Creatinina: producto de desecho del metabolismo muscular, filtrado por el riñón; sus niveles informan de la función renal.

Quién puede obtener la muestra

• El propio paciente puede recoger muestras sencillas: orina (elemental), heces, esputo.

• Las muestras invasivas (exudados internos, biopsias, sangre, LCR) las obtiene personal sanitario (enfermería/médico).

El TCAE colabora: prepara el material, informa al paciente, verifica el etiquetado, conoce las condiciones de conservación (nevera/estufa, protección de la luz) y traslada la muestra. No es competencia del TCAE valorar si hay que repetir la obtención.

Tubos de extracción, características de la orina y otras muestras especiales

Código de colores de los tubos de extracción y sus aditivos

Los tubos de vacío llevan un tapón de color que identifica el aditivo que contienen. Conocerlo es imprescindible para el TCAE, porque el tubo equivocado invalida la determinación.

• El citrato sódico actúa precipitando el calcio (anticoagulante reversible) y viene dosificado para una proporción fija de sangre: una parte de citrato por nueve de sangre. Por eso el tubo de coagulación debe llenarse exactamente hasta la marca; si se llena de menos, sobra citrato y el resultado se altera.

• El fluoruro sódico no es propiamente un anticoagulante: su función es inhibir la glucólisis (bloquea una enzima de la vía, la enolasa), de modo que las células de la muestra no sigan consumiendo glucosa en el tubo. Se combina con oxalato potásico, que es el que impide la coagulación.

• La heparina (sódica o de litio) es el anticoagulante del tubo de tapón verde; permite centrifugar enseguida y obtener plasma para bioquímica.

• El EDTA es quelante del calcio y conserva la morfología celular, por eso es el tubo de los estudios hematológicos.

Los tubos con aditivo se mezclan por inversión suave, sin agitar.

Características físicas de la orina: color y aspecto

• Color normal: la orina es amarilla, desde amarillo pálido hasta amarillo ámbar según lo concentrada que esté. El color se debe sobre todo al pigmento urocromo y, en menor medida, a otros pigmentos como la urobilina (que procede de la degradación de la bilirrubina: el urobilinógeno se oxida a urobilina y se elimina por la orina). Cuanto más concentrada está la orina, más intenso es el color; si está muy diluida, casi incolora.

• Aspecto: la orina recién emitida normal es transparente o solo ligeramente turbia. Una orina turbia puede deberse a sustancias sin importancia patológica (moco, células epiteliales, cristales o precipitados, esperma, contaminantes), pero también a leucocitos, hematíes o bacterias, que sí requieren estudio. La orina lechosa o turbia es un signo frecuente de infección urinaria, sobre todo si se acompaña de olor desagradable. La presencia elevada de microorganismos (bacterias y, en su caso, hongos o levaduras) es una causa típica de turbidez en un paciente con sospecha de infección.

• La turbidez aislada no se debe atribuir sin más a beber poco (eso intensifica el color, no enturbia) ni a la medicación antihipertensiva.

Obtención del líquido cefalorraquídeo (punción lumbar): posición del paciente

El LCR se obtiene mediante punción lumbar (también llamada punción espinal o raquídea), técnica estéril que realiza el médico; el TCAE colabora preparando el material y ayudando a colocar y sujetar al paciente.

• Posición habitual: decúbito lateral (derecho o izquierdo), con la espalda en el borde de la cama, cuello flexionado con el mentón pegado al pecho y rodillas flexionadas sobre el abdomen, sujetadas con los brazos: es la posición fetal, que abre los espacios intervertebrales.

• Alternativa: sentado con rodillas y cuello flexionados y los brazos apoyados sobre una mesa.

• La cama se coloca en horizontal a una altura cómoda para quien realiza la técnica. El paciente no debe moverse y debe respirar suavemente.

Exudado ótico

• Oído externo: se limpia antes el conducto con un antiséptico suave para retirar detritus y se toma la muestra con torunda (hisopo) estéril, raspado o aspiración, una torunda por cada oído.

• Oído medio: si hay supuración por tímpano perforado, se toma con torunda a través de un otoscopio estéril. Si no hay supuración accesible (tímpano íntegro), la muestra la obtiene el otorrinolaringólogo mediante punción del tímpano, llamada timpanocentesis o miringocentesis (en algunos manuales, otocentesis). No se hace con sondas.

Muestras de uñas para estudio de hongos

En la sospecha de onicomicosis:

• Se raspa la zona afectada con bisturí estéril: la base de la uña y el surco periungueal si se sospecha Candida; el extremo distal de la uña en las onicomicosis por dermatofitos. Se recogen también las escamas del lecho subungueal, raspando hasta llegar a la zona dolorosa, donde está el material de mejor calidad.

• A continuación se cortan fragmentos de la uña afectada con tijera fina, curva y estéril.

• Todo se recoge en una placa de Petri estéril.

Técnicas de imagen: principio de la resonancia magnética

La resonancia magnética (RM) no utiliza radiación ionizante (no usa rayos X, ni positrones, ni ultrasonidos). Emplea imanes potentes que crean un campo magnético intenso: los protones (núcleos de hidrógeno) del cuerpo se alinean con ese campo. Después se aplica un pulso de radiofrecuencia que los saca de su alineación; al retirarlo, los protones vuelven a alinearse y liberan energía, que los sensores detectan. Como esa señal varía según el tipo de tejido, se obtienen imágenes muy detalladas.

Fuentes: INGESA, Actualización de la fase preanalítica de los laboratorios clínicos del Hospital Cruz Roja de Ceuta (https://ingesa.sanidad.gob.es/dam/jcr:db5ebad8-526a-47aa-9bb1-24957afdd9a7/actualzFasePreanalitica.pdf); BD Vacutainer Venous Blood Collection Tube Guide (www.bd.com/vacutainer); Rev Med Hered 2015;26:60-61, Glucosa, ¿qué tubo de recolección usar? (http://www.scielo.org.pe/pdf/rmh/v26n1/a12v26n1.pdf); Lab Tests Online-ES, Urianálisis (https://www.labtestsonline.es/tests/urianalisis); MedlinePlus, Color anormal de la orina (https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003139.htm); García Noblet et al., Cromatosemiología clínica de la orina, Rev Inf Cient 2009 (https://www.redalyc.org/pdf/5517/551757314018.pdf); Hospital Universitario Reina Sofía, RD-7 Obtención de muestras de orina (https://www.sspa.juntadeandalucia.es/servicioandaluzdesalud/hrs3/fileadmin/user_upload/area_enfermeria/enfermeria/procedimientos/procedimientos_2012/rd7_obtencion_muestras_orina.pdf); Hospital Universitario Reina Sofía, RD-8 Colaboración y cuidados en la punción lumbar (Unidad de Investigación e Innovación de Cuidados, HURS); Complejo Hospitalario Universitario de Albacete, Manual de recogida, transporte y conservación de muestras de microbiología, 6.ª ed. 2022 (https://www.chospab.es/area_medica/microbiologia/docTomaMuestras/1_Manual_recogida_transporte_conservacion_muestras_microbiologia.pdf); MedlinePlus, Resonancia magnética (https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003335.htm); NIBIB, Magnetic Resonance Imaging (https://www.nibib.nih.gov/science-education/science-topics/magnetic-resonance-imaging-mri). Consultadas el 29/09/2026.

Procedimientos de toma de muestras

Norma general: identificar al paciente, lavarse las manos y usar guantes, respetar la asepsia (para evitar muestras contaminadas) y etiquetar el recipiente con los datos del paciente.

Orina de 24 horas (control de diuresis)

1. Por la mañana, el paciente orina y DESECHA esa primera micción (se anota la hora).

2. Recoge todas las micciones de las 24 horas siguientes en el contenedor.

3. A la misma hora del día siguiente, orina por última vez y añade esa micción al contenedor.

4. Se contabiliza el volumen total. El recipiente se mantiene refrigerado y tapado.

Urocultivo

• Recoger el chorro medio (mitad de la micción), preferentemente de la primera orina de la mañana, previa higiene genital, en frasco estéril.

• Enviar al laboratorio lo antes posible (idealmente < 1 h); si se demora, refrigerar a 4 °C.

Hemocultivo

• Se extrae cuando el paciente presenta un pico febril (≥ 38 °C), justo antes o durante la subida térmica, y antes de iniciar el antibiótico.

• Venopunción periférica con asepsia estricta; cambiar de lugar de punción y de equipo en cada extracción (se suelen obtener varias tandas).

Otras tomas

• Esputo: preferible el de primera hora de la mañana, tras enjuague bucal. En paciente con traqueostomía sin fuerza para toser, se obtiene con sonda de aspiración (lo realiza enfermería).

• Exudados: con torunda estéril; precisan análisis rápido.

• Oxiuros (test de Graham): se recoge por la mañana, antes de la higiene y la defecación, con cinta adhesiva en la zona perianal.

• Sangre: para la extracción se aconseja el método directo (con sistema de vacío).

Técnicas específicas de recogida por tipo de muestra

Identificación de la muestra en el momento de la recogida

Antes de recoger cualquier muestra, el TCAE comprueba la concordancia entre el paciente, la petición (volante) y la etiqueta del recipiente. La identificación debe ser activa: se pide al propio paciente que diga al menos dos identificadores inequívocos (nombre y apellidos, fecha de nacimiento, número de historia). El número de cama, la unidad o el diagnóstico no sirven como identificadores. La etiqueta se coloca en el contenedor, que es lo que viaja al laboratorio con la petición.

Orina en lactantes, niños que no controlan esfínteres y recién nacidos

El lactante y el recién nacido no controlan la micción, así que no se les puede pedir el chorro medio.

• Se lavan y secan los genitales y se coloca una bolsa colectora estéril, adhesiva y desechable de polietileno alrededor de los genitales o el periné.

• La bolsa no debe permanecer más de unos 20 minutos: si en ese tiempo no ha orinado, se retira, se repite el lavado y se coloca una bolsa nueva.

• En cuanto hay orina se retira la bolsa, se cierra bien y se envía sin trasvasar a otro recipiente (o se vacía en el contenedor, según el procedimiento del centro).

• No se usan bolsas reutilizables ni bolsas no estériles, y el sondaje no es el método ordinario.

Orina en el paciente sondado

Muestra para análisis o urocultivo desde la sonda:

1. Se pinza la sonda o el tubo de la bolsa, cerca de la sonda, para que se acumule orina recién producida (unos minutos, hasta media hora según protocolo).

2. Con guantes, se desinfecta la zona específica de punción (membrana o zona de látex) con un antiséptico. Los protocolos admiten clorhexidina al 2 %, alcohol al 70 % o povidona yodada.

3. Se deja actuar y secar el antiséptico al aire.

4. Se punciona con aguja estéril (o sistema de vacío con campana) y se aspiran unos 5-10 ml.

5. Nunca se toma la orina de la bolsa colectora, porque lleva tiempo estancada y puede estar contaminada.

Orina de 24 horas en el portador de sonda vesical: la recogida empieza por la mañana vaciando la bolsa y desechando ese contenido (equivale a desechar la primera micción); desde ese momento se guarda toda la orina hasta la misma hora del día siguiente.

Recogida de la orina de 24 horas, paso a paso

• El primer día se desecha la primera orina de la mañana y se anota la hora.

• Se recogen todas las micciones siguientes, incluida la primera de la mañana del día siguiente.

• El contenedor se guarda en frigorífico si está indicado. Si se pierde alguna micción, la recogida no vale y hay que empezar de nuevo.

Heces: estudio de digestión y estudio parasitológico

• Estudio de digestión (principios inmediatos): busca restos de grasas, proteínas e hidratos de carbono (almidones) mal digeridos, para valorar la malabsorción o la insuficiencia digestiva. Los días previos el paciente sigue su alimentación habitual, siempre que contenga grasas, proteínas y almidones, y se suspenden bismuto, carbón, parafina y estudios con bario.

• Estudio parasitológico: la eliminación de parásitos es intermitente, por lo que un estudio completo consta de tres muestras recogidas en días distintos (días sucesivos o alternos, según el laboratorio), en recipientes diferentes. Una sola muestra puede dar falsos negativos.

Líquido seminal

• Abstinencia sexual previa entre 3 y 5 días (y no más de 7). Con menos de 48 horas la muestra no es válida.

• Se obtiene por masturbación, tras lavarse genitales y manos, en frasco estéril de boca ancha, recogiendo todo el eyaculado. No sirven los preservativos comunes (son espermicidas) ni el coito interrumpido.

• Se entrega lo antes posible (idealmente antes de 30 minutos y siempre antes de 60), protegida de cambios de temperatura, por ejemplo junto al cuerpo.

Punción lumbar (LCR): colaboración del TCAE

• Técnica estéril realizada por el médico, con anestesia local; no requiere sedación general.

• Se punciona en la región lumbar, entre L3-L4, L4-L5 o L5-S1 (nunca en las vértebras cervicales).

• Posición más habitual: decúbito lateral en el borde de la cama más próximo al médico, con flexión de las piernas sobre el abdomen y flexión anterior de la cabeza y el cuello (posición fetal), espalda arqueada y hombros y caderas alineados. Alternativa: sentado, con rodillas y cuello flexionados.

• Cuidados tras la punción: vigilar la zona de punción (sangrado), el nivel de conciencia, la cefalea, las náuseas, los vómitos y los signos vitales. La cefalea pospunción se atribuye al orificio que queda en la duramadre y se reduce con agujas finas. La posición posterior depende del protocolo del centro: tradicionalmente se indicaba reposo en decúbito, pero las revisiones de evidencia citadas por los protocolos hospitalarios concluyen que el reposo en cama no reduce la cefalea, por lo que muchos centros lo han abandonado como cuidado de rutina.

Exudados con torunda

• Exudado nasal: se humedece el hisopo en solución salina estéril, se introduce unos 2 cm en la fosa nasal, se rota contra la mucosa y se repite en la otra fosa. Sirve, por ejemplo, para detectar portadores de Staphylococcus aureus.

• Exudado nasofaríngeo: con una torunda flexible que se pasa suavemente a través de la nariz hasta la nasofaringe, cerca del tabique y del suelo de la fosa; se rota y se extrae. Es la muestra para tos ferina y virus respiratorios.

• Exudado conjuntival: se toma antes de instilar colirios, anestésicos o antibióticos. Con una torunda estéril humedecida en suero fisiológico se frota la conjuntiva tarsal inferior y el fondo de saco, sin tocar el borde del párpado. Se usa una torunda distinta para cada ojo, identificando cuál es cuál. No se lavan los ojos antes.

Gasometría arterial

La gasometría arterial mide en sangre arterial la cantidad de oxígeno y de dióxido de carbono, la acidez (pH), el bicarbonato y la saturación de oxígeno. Se extrae con aguja fina, habitualmente de la arteria radial (previa prueba de Allen), o de la femoral o braquial. La jeringa se cierra y se envía al laboratorio de inmediato. No sirve para medir el colesterol, que se determina en suero de sangre venosa.

Esputo: finalidad del estudio

El análisis del esputo sirve para detectar infecciones del aparato respiratorio (cultivo de esputo: bacterias, hongos, micobacterias en neumonía, tuberculosis o bronquitis), valorar procesos inflamatorios y, mediante la citología de esputo, buscar células tumorales. Se obtiene con una tos profunda, preferentemente por la mañana; beber líquidos la noche anterior facilita la expectoración.

Antibiograma

El antibiograma es la prueba de laboratorio que determina la sensibilidad o resistencia de la bacteria aislada en un cultivo frente a un panel de antibióticos. Clasifica el microorganismo como sensible, intermedio o resistente a cada fármaco y permite elegir el antibiótico eficaz. Suele tardar 24-48 horas en las bacterias habituales.

Tubo de tapón verde

En la extracción de sangre, el tapón verde indica que el tubo contiene heparina (sódica o de litio) como anticoagulante; se usa para bioquímica en plasma.

Fuentes: Agencia de Calidad Sanitaria de Andalucía, Recomendación n.º 12 Identificación inequívoca de pacientes (2020); Hospital Universitario Reina Sofía, RD-7 Obtención de muestras de orina (https://www.sspa.juntadeandalucia.es/servicioandaluzdesalud/hrs3/fileadmin/user_upload/area_enfermeria/enfermeria/procedimientos/procedimientos_2012/rd7_obtencion_muestras_orina.pdf); Hospital Universitario Reina Sofía, RD-8 Colaboración y cuidados en la punción lumbar (HURS, Unidad de Investigación e Innovación de Cuidados); Complejo Hospitalario Universitario de Albacete, Manual de recogida, transporte y conservación de muestras de microbiología, 6.ª ed. 2022 (https://www.chospab.es/area_medica/microbiologia/docTomaMuestras/1_Manual_recogida_transporte_conservacion_muestras_microbiologia.pdf); UGC Microbiología Hospital Universitario Reina Sofía, Manual de toma de muestras (https://www.sspa.juntadeandalucia.es/servicioandaluzdesalud/hrs3/fileadmin/user_upload/area_medica/microbiologia/recogida_rs270720.pdf); INGESA, Actualización de la fase preanalítica de los laboratorios clínicos del Hospital Cruz Roja de Ceuta (https://ingesa.sanidad.gob.es/dam/jcr:db5ebad8-526a-47aa-9bb1-24957afdd9a7/actualzFasePreanalitica.pdf); Hospital Universitario de Getafe, Normas de recogida de una muestra seminal (SAC-HIP042, 2019); MedlinePlus, Gasometría arterial (https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003855.htm); MedlinePlus, Cultivo de esputo (https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003723.htm) y Evaluación citológica (https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/002323.htm); Clínica Universidad de Navarra, Diccionario médico: antibiograma (https://www.cun.es/diccionario-medico/terminos/antibiograma); BD Vacutainer Venous Blood Collection Tube Guide (www.bd.com/vacutainer). Consultadas el 29/09/2026.

Manipulación, transporte y conservación

El objetivo es que la muestra llegue al laboratorio en condiciones óptimas, sin alterarse ni contaminarse.

Reglas generales de transporte

• Trasladar la muestra en el menor tiempo posible (en general < 2 horas).

• Evitar la agitación y los movimientos bruscos (pueden hemolizar la sangre y deteriorar la muestra): fijar los recipientes en soportes adecuados.

• Proteger de la luz las muestras con analitos fotosensibles (p. ej. bilirrubina).

• Mantener la temperatura de conservación adecuada a cada muestra (refrigeración a 4 °C en muchas, congelación en otras, temperatura ambiente o estufa/37 °C en algunos cultivos).

Conservación

• Recipientes correctamente cerrados, etiquetados e identificados.

• Cumplir el tiempo máximo de conservación propio de cada determinación.

• Garantizar la bioseguridad (envases estancos, manejo como material potencialmente infeccioso).

Plazos preanalíticos, conservantes y embalaje para el envío de muestras

Separación del suero o del plasma

Tras la extracción, las células de la sangre siguen vivas en el tubo: consumen glucosa (la glucosa baja de media un 5-7 % por hora sin separar) y liberan sustancias como el potasio. Por eso el suero o el plasma deben separarse de las células lo antes posible, centrifugando la muestra. La norma de referencia del Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) fija como tiempo máximo de separación las 2 horas desde la extracción, y muchos laboratorios lo aplican como límite de trabajo para todos los analitos (algunos, como el amonio, exigen mucho menos). Si una muestra externa no puede llegar al laboratorio a tiempo, se centrifuga y se guarda el suero o el plasma separado en condiciones adecuadas.

Exudado faringoamigdalar: técnica correcta

• Material: depresor lingual y torunda con o sin medio de transporte.

• Bajo visión directa, con ayuda del depresor lingual, se frotan con la torunda las criptas amigdalares, la faringe posterior y cualquier zona con exudado, membranas o inflamación.

• No se debe tocar la mucosa oral, la lengua ni la úvula, para no contaminar la muestra con flora de la boca.

• No requiere medidas especiales de transporte y conservación: en medio de transporte aguanta menos de 24 horas a temperatura ambiente.

Orina de 24 horas con conservante: ácido vanilmandélico (VMA)

El ácido vanilmandélico es un metabolito de las catecolaminas (adrenalina y noradrenalina); su determinación se usa en el estudio de tumores como el feocromocitoma o el neuroblastoma.

• Se recoge orina de 24 horas en un contenedor que el laboratorio entrega con ácido clorhídrico (HCl) como conservante: habitualmente 10 ml de HCl 6N en adultos (5 ml en niños). El líquido del contenedor no se tira.

• Se recomienda además mantener el contenedor refrigerado durante la recogida.

• Hay que orinar primero en un recipiente limpio y verterlo con cuidado en el contenedor, porque el ácido puede producir quemaduras.

• Días antes se restringen alimentos y fármacos que interfieren (plátano, cítricos, chocolate, vainilla, café, té, frutos secos, etc.), siempre consultando al médico antes de suspender medicación.

Categorías de transporte de las sustancias infecciosas

La normativa de transporte (ADR, que sigue las recomendaciones de la OMS y de Naciones Unidas) agrupa las sustancias infecciosas en dos categorías:

• Categoría A: sustancia infecciosa que se transporta en una forma que, si hay exposición, es capaz de causar una incapacidad permanente o una enfermedad mortal o potencialmente mortal en personas o animales sanos. Se asigna al número ONU 2814 (afecta a seres humanos) u ONU 2900 (solo animales) y se embala según la instrucción P620.

• Categoría B: materia infecciosa que no cumple los criterios de la categoría A. Número ONU 3373, «Materia biológica, categoría B», instrucción de embalaje P650. Es la de la mayoría de las muestras diagnósticas.

• En caso de duda sobre si cumple los criterios, se asigna a la categoría A.

El triple embalaje

El requisito básico para enviar muestras biológicas fuera del centro es el embalaje triple:

1. Recipiente primario: el que contiene directamente la muestra; estanco para líquidos y a prueba de filtraciones para sólidos.

2. Embalaje (envase) secundario: envase estanco que protege y permite transportar uno o varios recipientes primarios; si van varios primarios frágiles, se envuelven o separan individualmente, y entre primario y secundario se pone material absorbente suficiente para absorber todo el contenido.

3. Embalaje exterior (terciario): protege el conjunto de daños físicos durante el transporte; lleva las marcas y etiquetas (por ejemplo, el rombo con «UN 3373» y la leyenda «Materia biológica, categoría B»).

El secundario o el exterior deben ser rígidos, y el primario o el secundario deben resistir sin fugas una presión interna de 95 kPa. El hielo o las bolsas de frío se colocan fuera del recipiente secundario.

Fuentes: CLSI PRE04/GP44 (resumen en PhleboPrep, https://www.phleboprep.com/learn/clsi-pre04-specimen-handling); Rev Med Hered 2015;26:60-61, Glucosa, ¿qué tubo de recolección usar? (http://www.scielo.org.pe/pdf/rmh/v26n1/a12v26n1.pdf); INGESA, Actualización de la fase preanalítica de los laboratorios clínicos del Hospital Cruz Roja de Ceuta (https://ingesa.sanidad.gob.es/dam/jcr:db5ebad8-526a-47aa-9bb1-24957afdd9a7/actualzFasePreanalitica.pdf); Complejo Hospitalario Universitario de Albacete, Manual de recogida, transporte y conservación de muestras de microbiología, 6.ª ed. 2022 (https://www.chospab.es/area_medica/microbiologia/docTomaMuestras/1_Manual_recogida_transporte_conservacion_muestras_microbiologia.pdf); Hospital Universitario Virgen Macarena, Instrucciones para el paciente: orina de 24 horas para catecolaminas y metabolitos (https://www.hospitalmacarena.es/wp-content/uploads/2020/07/CATECOLAMINASV62020.pdf); WOAH, Manual Terrestre, capítulo 1.1.3 Transporte de material biológico (https://www.woah.org/fileadmin/Home/esp/Health_standards/tahm/1.01.03_TRANSPORT.pdf). Consultadas el 29/09/2026.